Préanalytique

Type de prélèvement standard pour les analyses de chimie clinique, de sérologie, d'immunologie et d'endocrinologie.

Tubes : 4 ou 9 ml avec bouchon rouge ou tubes de 4 ou 10 ml avec billes.
Prélèvement : laissez couler le sang (3 fois le volume du sérum nécessaire) dans un tube à sérum après avoir ponctionné la veine. Après un temps de coagulation d'environ 30 à 60 minutes (à température ambiante), détachez le caillot de sang de la paroi du tube à l'aide d'un bâtonnet stérile ou d'une longue canule et centrifugez pendant 10 minutes à 2.500 tours/minute. Retirez le surnageant (sérum) et transférez-le dans un tube d'expédition.

Pour la plupart des analyses de chimie clinique, de sérologie et d'endocrinologie, les deux  types de prélèvements conviennent de la même manière.

Sérum : convient pour toutes les analyses standard des domaines de laboratoire mentionnés.
Plasma hépariné : plus facile et plus rapide à obtenir, le rendement est généralement plus élevé et le risque d'hémolyse légèrement plus faible. Cependant, certaines analyses de routine ne peuvent pas être réalisées à partir de plasma hépariné : entre autres, cPLI/fPLI,  l'électrophorèse des protéines et la SAA ne peuvent être mesurées qu'à partir de sérum.

Dans notre catalogue d´ analyses en ligne, vous trouverez des informations actualisées sur les différentes analyses et/ou profils. (Vous ne devriez recourir au plasma EDTA qu'en cas d'urgence en raison de nombreuses restrictions analytiques).

Matériel standard pour toutes les analyses d´ hématologie (comptage, formule sanguine, groupes sanguins) et pour les analyses de biologie moléculaire (tests génétiques, recherche de pathogènes sanguins par PCR).
Tube : 3 ml avec bouchon violet.
Prélèvement : ponctionnez une veine à l'aide d'une aiguille et laisser le sang s’écouler dans le tube (respectez le marquage du niveau de remplissage!). Refermez ensuite le tube et mélangez bien le contenu (agitez légèrement, ne pas secouer).

Le plasma hépariné convient pour la plupart des analyses de chimie clinique, de sérologie et d'endocrinologie.

Tubes : 4 ml avec bouchon vert.
Prélèvement : après avoir ponctionné la veine, faites couler le sang dans un tube contenant de l'héparine comme anticoagulant (respectez le repère du niveau de remplissage!). Fermez le tube et mélangez bien le contenu (agitez légèrement, ne pas secouer). Pour obtenir du plasma, centrifugez si possible immédiatement (10 minutes à 2500 tr/min) et transférez le surnageant clair dans un tube d'expédition.

Le plasma citraté est nécessaire pour les analyses de coagulation.
Tubes : 2,0 ml avec bouchon bleu clair.
Prélèvement : pour pouvoir réaliser les analyses de coagulation, il faut un rapport de mélange exact de 1:10 entre le citrate de Na (3,13-3,8%) et le sang veineux (1 partie de citrate de Na + 9 parties de sang). Il est pour cette raison important de respecter le marquage du niveau de remplissage. Mélangez bien le contenu (agitez légèrement, ne pas secouer). Centrifugez ensuite pendant 10 minutes à 2500 tr/min et transférez le surnageant de plasma dans un tube d'expédition.

Pour le transport d'échantillons congelés, nous vous proposons, dans la mesure du possible, notre service coursier. Si cela n'est pas possible, nous mettons à votre disposition un conteneur réfrigéré spécial. Ce récipient doit être congelé à plat pendant 24 heures avant l'envoi. Vous pouvez ensuite introduire l'échantillon, également congelé, dans le récipient et l'envoyer par la poste.

Transférez les échantillons de synovie dans des tubes EDTA. Comme pour le sang EDTA, il faut faire attention au marquage du niveau de remplissage. Envoi rapide nécessaire.

Tubes : tubes spéciaux avec cuillère intégrée et bouchon à vis brun. Ne pas utiliser d'autres récipients.
Prélèvement : recueillez le matériel le moins contaminé possible (pas de conglomérats de terre, pas de litière de chat). Respectez les quantités minimales.
En cas de suspicion d'infection par Strongyloides, l'échantillon doit être prélevé par voie rectale. En raison des quantités toujours faibles de fientes chez les oiseaux et du risque de déshydratation qui en résulte, il est recommandé de prélever un écouvillon cloacal en milieu de transport pour les analyses microbiologiques.

Échantillons pour la technique McMaster :

Récipient : Utilisez le gobelet à urine pour l'envoi (peut être commandé comme pot à selles grands animaux dans la boutique)

Prélèvement :

• Prélevez une quantité de la taille d'une noix (10g) dans plusieurs crottins de cheval,
• Évitez toute contamination, idéalement prélevez par voie rectale, alternativement collectez le plus possible de matériel fraîchement excrété).
• Transférez l'échantillon au laboratoire rapidement après le prélèvement et si possible réfrigéré.

Préparation de lames porte-objets pour la détection des œufs d'oxyures chez le cheval :

Prélèvement :

• Prélevez avec du scotch transparent : tamponnez une à deux fois la zone périanale avec le côté collant, puis collez une seule couche lisse (sans plis ni poches d'air) sur une lame porte-objet.
• Préparez maximum deux lames

Pour les analyses bactériologiques et mycologiques (levures et champignons, pas les dermatophytes), on utilise en général des écouvillons avec un milieu de transport. Vous trouverez ici des informations détaillées sur le préanalytique en microbiologie.
Les dermatophytes :
Les écouvillons ne sont pas adaptés à ce groupe d'agents pathogènes. Veuillez envoyer des poils avec racines ou des grattages.
Dermatophilus congolensis :
Veuillez envoyer les zones cutanées modifiées, les raclages cutanés, les pustules ou les croûtes.
Les mégabactéries :

Envoyez un écouvillon de jabot ou de cloaque (selles).
Les chlamydias, les mycoplasmes et les virus sont des agents pathogènes intracellulaires. Lors de l'écouvillonnage, il faut donc veiller à obtenir le matériel le plus cellulaire possible (effectuez l'écouvillonnage avec une pression modérée). Le cas échéant, les dépôts gênants (pus, mucus, croûtes ou autres) doivent être éliminés au préalable.
Pour les analyses virologiques, les écouvillons sont en général envoyés à sec, sans milieu de transport.

Pour les poils, c'est surtout le tiers inférieur, y compris la racine, qui est important (détection des acariens ou des dermatophytes). Les poils doivent être arrachés sur les zones cutanées modifiées juste avant la transition avec la peau saine.
Le type de raclage cutané dépend de l'agent pathogène recherché :

• Dermatophytes et Demodex : réalisez un grattage profond de la peau (pour les Demodex, le mieux est de le faire sur la crête d'un pli de peau écrasé).
• Sarcoptes et Malassezia : faites plusieurs grattages étendus et superficiels.
• Acariens vivant en surface (par ex. cheyletielles) : faites un calque au scotch et collez-le sur toute la surface d'une lame.

La meilleure façon de fixer les préparations cytologiques est de les étaler sur une lame  immédiatement après le prélèvement et de les laisser sécher à l'air. Selon le degré de turbidité (qui correspond généralement à la teneur en cellules), les ponctions liquides, l'urine, la synovie, les lavages et autres sont étalés soit nativement, soit après centrifugation, le sédiment est étalé comme un frottis sanguin (étalez les liquides troubles nativement, pour les liquides clairs il est conseillé d´étaler le sédiment). La plupart du temps, il est conseillé de réaliser les deux préparations.
Les écouvillons de plaies, les écouvillons de muqueuses et autres doivent être étalés sur la lame en trois bandes parallèles de 2 cm de long chacune.

Les biopsies par ponction à l'aiguille fine doivent être préparées, selon leur consistance, comme un frottis sanguin ou comme une "préparation à écraser".

Afin de prévenir les résultats faussement positifs, il faut éviter de contaminer le matériel d'échantillonnage avec de l'ADN ou de l'ARN étranger. Il faut donc veiller à travailler "proprement" (gants jetables) et rapidement. Le tube d'échantillon doit être bien fermé.
Les échantillons de sang doivent être envoyés sous forme de sang EDTA. Pour d'autres matériaux liquides tels que les liquides de ponction, les sécrétions, le liquide céphalorachidien, etc., veuillez utiliser des tubes stériles sans aucun additif.
Les écouvillons et les échantillons de tissus doivent être envoyés "secs" dans des tubes stériles. Ne pas utiliser de milieux de culture ou de solution saline! Exception: les écouvillons pour la PCR d'Aspergillus doivent être humidifiés avec un peu de solution saline stérile.